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磁珠法质粒DNA小量提取试剂盒(1~2mL)图片
产品货号:
GS0113
中文名称:
磁珠法质粒DNA小量提取试剂盒(1~2mL)
英文名称:
MagBead Plasmid DNA Mini-Preps Kit(1-2mL)
产品规格:
50次|100次
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

本试剂盒将磁性纳米分离技术和细菌细胞的SDS碱裂解法结合从菌体中提取高质量的质粒DNA。在离心力的作用下细胞碎片和SDS复合物沉淀下来。在一定的条件下磁珠能很好的吸附存在于上清中的质粒DNA,其他杂质如蛋白质、盐离子等通过洗涤被除去。当条件改变时,磁珠释放吸附的质粒DNA。对于高拷贝质粒,从2mL过夜培养的菌液(OD600=2.0)中可以获得超过15μg的质粒DNA。


本试剂盒提取得到的质粒纯度高,OD260/OD280比值一般为1.8~1.9之间,OD260/OD230比值大于2.0,可直接用于转化、DNA测序、PCR和酶切等后续实验。




  • 与同类产品相比,提取效率更高,获得质粒的纯度更高;
  • 与柱式法相比,可大大减少离心次数,获得完整性更好的质粒。



组分50T100T
Buffer MP114mL28mL
Buffer MP214mL28mL
Buffer MP314mL28mL
MagPure Beads1.25mL2.5mL
Buffer MPB30mL60mL
TE Buffer(pH8.0)10mL20mL
RNase A(10mg/mL)210μL420μL



  • 试剂盒中的MagPure Beads和加入RNase A的Buffer MP1请存放于2~8℃,其他试剂室温保存。
  • Buffer MP2和Buffer MP3中含有刺激性的化合物,操作过程中应穿上实验服,戴好乳胶手套,避免沾染皮肤、眼睛和衣服,防止吸入口鼻。沾染皮肤或眼睛后,请立即用清水或生理盐水冲洗,必要时寻求医生的帮助。



  • 自备材料:磁力架、水浴锅、小型高速离心机(最大离心力≥ 12000×g)、1.5mL离心管、70%乙醇。
  • 试剂盒初次开启,将RNase A全部加入Buffer MP1中,充分混匀后在瓶身做好标记。储存于2~8℃,有效期6个月。
  • 每次使用前请检查Buffer MP2是否出现沉淀,如有沉淀,请于37℃溶解沉淀,待冷却至室温后使用。



  • 在含合适抗生素的培养基中接种目标菌株,于37℃摇床充分振荡培养12~16小时。
    • 菌液状态对质粒DNA得率非常关键,请用不超过容器容量1/4体积的培养基进行培养。
    • 处于生长平台期的菌体用于质粒抽提得率最高,过度培养可能导致DNA降解。
  • 对于高拷贝质粒,取1~2mL菌液,室温10000rpm离心2min收集菌体,吸净上清。
    • 对于高拷贝质粒,从2mL过夜培养菌液中通常可以获得超过15μg质粒DNA,不推荐使用更大的菌液量。
    • 对于低拷贝质粒,如果使用更多的菌液,则同一个样品分多管收集,每管不超过5mL,分别裂解,然后用同一批MagPure Beads吸附质粒DNA获得更高的得率。
  • 向菌体沉淀中加入200μL Buffer MP1,吸打或振荡至彻底悬浮菌体。
    • Buffer MP1首次使用时请检查是否已加入RNase A。
    • 请彻底悬浮菌体,否则影响得率和质量。
  • 加入250μL Buffer MP2,立即温和颠倒离心管5~10次混匀,室温静置3~5min至完全裂解。
    • 裂解时间与菌量相关,菌量多则适当延长时间,最长不能超过5min。
    • 如果同时操作多个样品,每加入一管混匀一管,不要采用全部加入一起混匀的方法,计时从第一管样品加入开始。
    • 混匀时,动作要温和,如果剧烈震荡,可能把基因组DNA打断混杂在质粒中。
  • 加入200μL Buffer MP3,立即温和颠倒离心管5~10次充分混匀。
    • 如果同时操作多个样品,每加入一管混匀一管,不要采用全部加入一起混匀的方法。
    • 如果起始菌液较多,混匀后室温静置5min以彻底去除RNA。
  • 于离心机最大转速(≥ 12000rpm)离心5~10min,小心吸取600μL上清并转移至新的1.5mL离心管中,然后向上清液中加入与上清等体积的Buffer MPB和25μL MagPure Beads,温和吸打混匀,室温静置1min。
    • 加MagPure Beads之前,请将其充分混匀。
    • 请务必将MagPure Beads加至液面以下,尽量将枪头上残留MagPure Beads吸打干净。
    • 处理多个样品时,可先将Buffer MPB与MagPure Beads按24:1的体积比混匀,然后向每个离心管当中加入625μL上述混合液。
  • 将离心管置于磁力架上5min,待MagPure Beads完全吸至管壁上之后,吸弃上清,然后从磁力架上取出离心管。
    • 吸弃上清前,若管口粘有少量MagPure Beads,请用上清液将其洗至离心管内,以确保所有MagPure Beads吸附至管壁上。
    • 当所有MagPure Beads完全吸至管壁上时,上清液应是无色澄清,若5min后上清液是淡黄色,请适当延长吸附时间,直到上清液无色澄清。
    • 吸弃上清时,请勿吸入MagPure Beads,尽量吸净上清。
    • 从磁力架上取出离心管后,若有少量上清,请将离心管置于磁力架上,再次吸取上清。
  • 向离心管中加入900μL 70%乙醇,缓慢吸打混匀,将离心管置于磁力架上1min,待MagPure Beads完全吸至管壁上之后,吸弃上清,从磁力架上取出离心管。
    • 吸弃上清前,若管口粘有少量MagPure Beads,请用上清液将其洗至离心管内,以确保所有MagPure Beads吸附至管壁上。
    • 吸上清时,请勿吸入MagPure Beads,尽量吸净上清。
  • 重复步骤8一次,室温开盖干燥15~20min或者55℃恒温箱中开盖干燥5~7min至管内无液体残留。
    • 干燥前,请尽量将管内液体吸干。
    • 干燥前,若出现液体挂壁现象,可将离心管短暂离心之后,再将其置于磁力架上,待所有MagPure Beads完全吸至管壁之后再吸净管内液体。
  • 加入50~100μL的TE Buffer(pH8.0),65℃水浴5~10min,间或混匀。
    • 请将管壁上所有MagPure Beads悬浮在TE Buffer中。
    • 根据实验需要可以将TE Buffer(pH8.0)用无菌的双蒸水(pH>7.5)代替。
  • 取出离心管并置于磁力架上1min,待MagPure Beads完全吸至管壁上之后,吸取上清至新的离心管,即获得纯的质粒DNA。
    • 吸取上清前,请确保所有MagPure Beads完全吸至管壁,请勿吸入MagPure Beads,否则影响产物纯度。



  • 未提取出质粒或质粒得率较低
    • 菌株老化。请涂布平板培养后,重新挑选单菌落进行液体培养。
    • 质粒拷贝数低。由于使用低拷贝数载体引起的质粒DNA提取量低,可以使用更多的菌量但需要相应增加溶液使用量。
    • 菌体中无质粒。有些质粒本身不能在某些菌种中稳定存在,经多次转接后有可能造成质粒丢失。例如,柯斯质粒在大肠杆菌中长期保存不稳定,因此不要频繁转接,每次接种时应接种单菌落。另外,检查筛选用抗生素使用浓度是否正确。
    • 碱裂解不充分。使用过多菌体培养液,会导致菌体裂解不充分,可减少菌体用量或增加Buffer MP1,MP2和MP3的用量。
    • 溶液使用不当。Buffer MP2和MP3在温度较低时可能出现沉淀,应置于37℃温浴直至沉淀溶解,待冷却至室温后使用。
    • 洗脱液不合适。洗脱效率与洗脱液的pH值有关,如果使用水进行洗脱,请确保其pH> 7.5,如果pH过低可能导致洗脱量低,可以用1mol/L氢氧化钠溶液调节水的pH值。
    • 溶液失效。Buffer MP2长期暴露在空气中容易失效,请每次使用完后,立即盖紧瓶塞,以免失效,造成碱裂解不充分。
    • 结合不充分。加入Buffer MPB和MagPure Beads之后,请将其充分混匀,并使MagPure Beads处于悬浮状态。
    • 操作过程中丢失MagPure Beads。结合及洗涤过程中可能有少量的MagPure Beads粘在离心管管口上,吸弃上清前请用少量的上清液清洗管口,使粘在管口的MagPure Beads也吸附在管壁上。
    • 洗脱过程操作不当。洗脱时请将管壁上所有MagPure Beads充分悬浮在TE Buffer中。
    • 洗脱过程忘记水浴。加入TE Buffer之后请65℃水浴5~10min,常温条件下MagPure Beads只能释放少量的质粒DNA,65℃条件下MagPure Beads与DNA的相互作用力减弱,MagPure Beads释放出大量的质粒DNA。
  • 质粒纯度不高
    • 混有蛋白。请勿使用过多菌体。经Buffer MP1,MP2和MP3处理,离心后溶液应为澄清,如果还混有微小蛋白悬浮物可再次离心,并延长离心时间,完全沉淀蛋白后再取上清。
    • 混有RNA。RNase A处理不彻底,请减少菌体用量或加入Buffer MP3后室温再延长放置时间5~10min。如果Buffer MP1已保存6个月以上,请在Buffer MP1中再添加终浓度为100μg/mL的RNase A。
    • 混有基因组DNA。加入Buffer MP2后应温和混匀,如果剧烈振荡,可能把基因组DNA打断从而混杂在质粒中。如果加入Buffer MP2后过于粘稠,无法温和混匀,请减少菌体用量。细菌培养时间过长会导致细胞内DNA的降解,培养时间不要超过16h。
    • 质粒的二聚体和多聚体形式。质粒复制过程中形成的,与宿主菌相关,电泳可检测出多条条带,单酶切处理后可变成单一条带。
    • 乙醇有残留。请吸弃上清之后从磁力架上取出离心管,放置2min之后再将离心管置于磁力架上30 s,吸净管底的液体。若出现残液的挂壁现象,请短暂离心之后再将离心管置于磁力架上30 s,吸净离心管内的液体。
    • MagPure Beads洗涤不充分。向离心管中加入70%乙醇以后,请充分混匀,使MagPure Beads充分悬浮在70%乙醇中。
    • MagPure Beads没有完全干燥。请将MagPure Beads完全干燥,保证无乙醇残留。
    • 最后一步吸取上清时吸入MagPure Beads。请确保所有MagPure Beads吸至管壁上,再吸取上清。如果不小心吸入MagPure Beads,请将上清液放回原管,待MagPure Beads完全吸至管壁之后重新吸取上清。或者将吸取的上清DNA溶液10000rpm离心2min,再取上清。

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